间接红血球凝集反应(简称间接血凝)是间接凝集反应中应用最广的一种方法。
原理
以红血球为载体的间接凝集反应叫做间接血凝。将抗原吸附在红血球上用以检测微量抗体称为正向间接血凝,以抗体吸附于红血球上,检测相应的抗原,称为反向间接血凝。
用抗原吸附红血球,一般比较容易,但用免疫血清吸附红血球,则困难得多,而且往往不易获得良好的结果,因为免疫血清中的成分非常复杂。许多其他蛋白质和非抗体活性的免疫球蛋白占据红血球的表面,而影响血球的特异性凝集。
材料与试剂
1.红血球
2.反应板 分聚苯乙烯塑料板和有机玻璃板(聚甲基丙烯酸甲酯),每板又有96孔和72孔两种规格。按孔型又可分为V和U型两种,V型具有更典型的凝集模型,U型有时比V型的血清效价高1~2孔。反应板不能煮沸消毒和浸泡于来苏儿水中。消毒可用0.5%甲醛溶液,1%新洁尔灭及紫外线照射等。
3.稀释棒 由合金制成。棒头有8条沟,吸液量为0.025ml,通过火焰,使表面氧化变粗易于吸取液体。它的作用是蘸取、转移、混合液体。为了长期保持棒头的氧化层,每使用20次左右,应过火焰一次。
4.标准滴管 每滴0.025ml。
5.微型振荡器
6.兔血清盐水 作为稳定剂,用于悬浮致敏红血球以及稀释供试血清。制法为:无菌采取兔血,收集血清,灭活后
7.抗原 尽可能使用高纯度的抗原。
8.供试血清或其它含抗体材料 供试血清必须灭活,加9倍2.5%的红血球悬液,
9.醛化剂 甲醛、戊二醛、丙酮醛等。
10.优质鞣酸
11.0.15Mol/L pH6.4PBS液,用于红血球致敏。
12.0.15Mol/L pH7.2PBS液,用于一般稀释液。
13.0.02%牛血清白蛋白PBS液
14.生理盐水
红血球的处理
1.新鲜红血球 新鲜红血球用阿氏液保存于
2.红血球醛化极其优点
(1)醛化方法:常见的醛化剂有甲醛、戊二醛和丙酮醛。
甲醛醛化过程:①将红血球用pH7.2PBS反复洗涤4次,以除去血清蛋白以及红血球表面的胶体物质;②按1︰8的比例取红血球(压积)和3%甲醛液(用pH7.2PBS稀释,预先冷却至
戊二醛醛化过程:①取新鲜红血球,以生理盐水洗涤4次;②以0.15Mol/L pH 7.2 PBS配成1%戊二醛溶液,
丙酮醛—甲醛双醛化过程:①取新鲜红血球,洗涤4次,配成8%的悬液;②于红血球悬液中加等量的3%丙酮醛室温电磁搅拌16h~18h;③洗涤5次,再配成8%的悬液;④于红血球悬液中加等量的3%甲醛,电磁搅拌16h~18h;⑤洗涤5次,最后以pH 7.2 PBS配成10%的悬液,加1/万硫柳汞防腐,
(3)醛化红血球的优点:①性质稳定,不影响红血球表面的吸附能力;②重复性好,易标准化。③可较长期保存,醛化后
(4)影响醛化的因素:①红血球的洁净程度:由于红血球表面残留血浆蛋白和其它胶质,易引起自家凝集,所以一定要充分洗净;②红血球的浓度:醛化时应尽量使红血球稀释度低一些,以减少红血球的凝集和变形;③醛化时的温度与醛化红血球的质量有很大关系,一般认为最好是
表 各种双醛化红细胞的结果比较
双 醛 化 |
上海第六 人民医院 |
首都 医院 |
国外 资料 |
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抗原滴度 |
抗原滴度 |
脉冲/min |
抗原滴度 |
脉冲/min |
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丙酮醛+甲醛 戊二醛+丙酮醛 丙酮醛+戊二醛 |
217 219 215 |
211 - - |
5107~5118 - - |
2×106 6×106 6×106 |
1684 2154 3750 |
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脉冲/min是131I标记的特异性抗体结合到细胞上的指标,脉冲数越大,结合抗体量也越多。但是从表5-1中可以看出结合量同可测出的抗原滴度是不平行的。
适当的振荡可使醛化剂与红血球充分接触,并可排除凝块形成。但过分地振荡,则易产生气泡,引起红血球变形。
3.红血球鞣化 多糖、脂多糖、类脂等一些半抗原易于吸附红血球表面,所以一般醛化处理即可。但对于许多蛋白质抗原,由于不易吸附于红血球表面,所以在醛化的基础上,必须再以一定浓度的鞣酸进行处理,强化它对蛋白质的吸附能力。
有人认为双醛化后可不必进行鞣化。首都医院做了“丙酮醛+甲醛+鞣化”和不加鞣化得出相同的抗原滴度。但多数意见认为醛化后仍需鞣化比较好。
(1) 鞣化过程:①将10%醛化红血球用生理盐水洗涤2次,再以0.15Mol/L pH7.2PBS洗涤1次,最后以PBS配成2.50%悬液;②称取优质鞣酸20mg,以生理盐水4ml配成1﹕200的浓度,于
(2)影响鞣化的因素:①鞣酸的质量:这是很重要的,所以必须采用优质鞣酸。分析纯的鞣酸呈面包屑状,不呈面粉状,有折光性;②鞣酸的浓度:浓度过高,可以出现红血球的凝集现象;浓度过低,达不到红血球的活化作用。醛化过的红血球所采用的鞣酸浓度一般比新鲜红血球高10倍。通常以1:2 000为佳;③鞣化时间:鞣化过程一般10min~15min即可完成。时间再长也不能吸附更多的抗原,提高血凝滴度。鞣化时采用的pH对吸附抗原和血凝滴度影响不大,一般采用pH7.2的PBS液。
红血球的致敏
1.致敏抗原剂量的确定 一般而言,在一定的范围内,抗原的浓度与试验的敏感性呈正比,超过这个范围,再增加抗原,敏感性不会再提高,而且过大,有时会引起非特异性凝集。当采用一种新的抗原时,必须经过试验,选择适当的抗原致敏浓度,即把抗原稀释成几个不同的浓度分别致敏红血球。再用这些致敏红血球分别与标准阳性血清进行试验,与标准阳性血清呈最高滴度的阳性反应的最小抗原剂量,即为该抗原的单位计量。致敏时,根据不同的抗原,可采用2~4个单位计量进行致敏。
2.致敏方法 各种抗原的致敏方法大致相同,一般蛋白质的致敏方法如下:
所需浓度的抗原 1 份
pH6.4PBS液 4 份
2.50%的鞣化红血球悬液 1 份
混匀,置
3.影响红血球致敏的因素
⑴要有高纯度或高效价的抗原或抗体。
⑵被致敏抗原或抗体的适当剂量和浓度。如抗体一般以μg/ml IgG为宜。抗猪瘟IgG一般用80μg/ml~160μg/ml,抗口蹄疫IgG 20μg/ml~40μg/ml,抗猪水泡病IgG 130μg/ml~160μg/ml,抗猪肺疫IgG 30μg/ml ~40μg/ml,抗猪弓形体20μg/ml~40μg/ml,抗原一般用0.2mg/ml~1mg/ml。
⑶pH:除鸡卵蛋白采用4.6~5.1外,其它通常采用5.6~6.4,高于7.2或低于4.6均可使红血球发生自凝。
⑷致敏温度:一般为
⑸致敏时间:一般采用30min为最适时间,具有良好的特异性和重复性。也有采用60min。时间过长,会造成红血球的形态不整,反应结果紊乱等。
⑹血球浓度:一般为1%,范围为0.5%~1.5%。
操作方法
可采用试管法、凹窝板法和微量法。前者稀释度准确、结果清晰、终点明确。后者具有节约材料、操作方便、结果出现迅速等优点。
试管法的供试材料用兔血清盐水二倍递减稀释,每管0.50ml,各管加致敏血球0.05ml,充分振荡,混匀后置室温,红血球完全沉下(需数小时)或过夜后判定结果。
每次试验需做下列对照:①血清对照:最高浓度的血清+鞣酸血球;②鞣酸血球对照:兔血清盐水+鞣酸血球;③致敏血球对照:兔血清盐水+致敏血球;④标准阳性血清对照:稀释已知滴度的阳性血清,加致敏血球以检验试验的敏感性是否前后一致。
结果判定
++++:管底呈细密的颗粒凝集,边缘不整齐。
+++ :全管底呈光滑的均匀片层,边缘折叠。
++ :全管底呈光滑的均匀片层,如伞状。
+ :管底大部分复以光滑片层,边缘稍厚。
± :较“+”面积更小,中央有沉积的红血球。
— :红血球沉积在管底中央,如小圆盘或钮扣状。
以“++”为滴度终点。