聚合酶链反应(PCR)技术是在体外进行的由引物介导的酶促DNA扩增反应。PCR的原理是在模板DNA、PCR引物、四种脱氧核糖核苷酸(dNTP)及适当浓度的Mg²⁺存在的条件下，依赖于DNA聚合酶的体外酶促合成反应。两个引物分别位于靶序列两端，同两条模板的3’端互补，由此限定扩增片段。PCR反应由一系列的变性→退火→延伸反复循环构成，即在高温下模板双链DNA变性解链，然后在较低温度下同过量引物退火，再在适中温度下由DNA聚合酶催化进行延伸。理论上，经过N次循环可使特定片段扩增到2n-1，考虑到扩增效率达不到100%，所以通常经25到30次循环可扩增到10⁶倍，足够后续实验展开。

常见问题分析与解决方法：

1、无扩增条带

1)酶失活或在反应体系中未加入酶。Taq DNA聚合酶因保存或运输不当而失活，往往通过更换新酶或用另一来源的酶以获得满意的结果。

2)模板含有杂质。特别是对甲醛固定及石蜡包埋的组织常含甲酸，造成DNA脱嘌呤而影响PCR的结果。

3)变性温度是否准确：PCR仪指示温度与实际温度是否相符，过高酶在前几个循环就迅速失活；过低则模板变性不全。

4)反应系统中污染了蛋白酶及核酸酶，应在未加Taq酶以前，将反应体系95℃加热5-10 min。

5)引物变质失效。人工合成的引物是否正确。是否纯化，或因储存条件不当而失活。

6)引物错误。利用BLAST检查引物特异性或重新设计引物。

7)DNA凝胶电泳时加入阳性对照，确保不是DNA凝胶和PCR程序的问题。

2、PCR产物量过少

1)退火温度不合适。以2度为梯度设计梯度PCR反应优化退火温度。

2)DNA模板量太少。增加DNA模板量。

3)PCR循环数不足。增加反应循环数。

4)引物量不足。增加体系中引物含量。

5)延伸时间太短。以1 kb/min的原则设置延伸时间。

6)变性时间过长。变性时间过长会导致DNA聚合酶失活。DNA模板中存在抑制剂。确保DNA模板干净。

3、扩增产物在凝胶中涂布或成片状条带弥散

1)酶量过高。减少酶量；酶的质量差，调换另一来源的酶。

2)dNTP浓度过高。减少dNTP的浓度。

3)MgCl₂浓度过高。可适当降低其用量。

4)模板量过多。质粒DNA的用量应<50 ng，而基因组DNA则应<200 ng。

5)引物浓度不够优化。对引物进行梯度稀释重复PCR反应。

6)循环次数过多；增加模板量减少循环次数至30，缩短退火时间及延伸时间，或改用二种温度的PCR循环。

7)退火温度过低。

8)电泳体系有问题：

①凝胶中缓冲液和电泳缓冲液浓度相差太大；

②凝胶没有凝固好；

③琼脂糖质量差。

9）若为PCR试剂盒则可能：

①　由于运输储存不当引起试剂盒失效；

②　试剂盒本身质量有问题，如引物选择、循环参数等选择不当。

10）降解的陈旧模板扩增也易产生涂布。

4、扩增产物出现多条带(杂带)

1)引物用量偏大，引物的特异性不高。应调换引物或降低引物的使用量。

2)循环的次数过多。适当增加模板的量，减少循环次数。

3)酶的用量偏高或酶的质量不好，应降低酶量或调换另一来源的酶。

4)退火温度偏低，退火及延伸时间偏长。应提高退火温度，减少变性与延伸时间，也可采用二种温度的PCR扩增。以2度为梯度设计梯度PCR反应优化退火温度。

5)样品处理不当。

6)Mg²⁺浓度偏高，因适当调整Mg²⁺使用浓度。

7)若为PCR试剂盒，也可能时试剂盒本身质量有问题。

8)复制提前终止。使用非热启动的聚合酶时常有发生。冰上准备反应体系或采用热启动聚合酶。

9)反应缓冲液未全融化或未充分混匀。确保反应缓冲液融化全并混匀。

10)引物特异性差。利用BLAST检查引物特异性或重新设计引物。

11)引物量过多。减少反应体系中引物的用量。

12)模板量过多。质粒DNA的用量应<50ng，而基因组DNA则应<200ng。

13)外源DNA污染。确保操作的洁净。

5、阴性对照出现条带

试剂，枪头，工作台污染。使用全新的试剂和枪头，对工作台进行清洁。

6、条带大小与理论不符

1)污染。使用全新的试剂和枪头，对工作台进行清洁。

2)模板或引物使用错误。更换引物和模板。

3)基因亚型。对研究的基因进行序列分析和BLAST研究。